禽流感病毒H5/H7/H9型(H5/H7/H9)三重核酸檢測試劑盒
(熒光RT-PCR法)
【產品名稱】
通用名稱:禽流感病毒H5/H7/H9型(H5/H7/H9)三重核酸檢測試劑盒(熒光RT-PCR法)
【包裝規格】50T/盒
【預期用途】
禽流感病毒(AIV)屬甲型流感病毒。流感病毒屬于RNA病毒的正黏病毒科,分甲、乙、丙3個型。其中甲型流感病毒多發于禽類,一些甲型也可感染豬、馬、海豹和鯨等各種哺乳動物及人類;乙型和丙型流感病毒則分別見于海豹和豬的感染。甲型流感病毒是依據病毒表面的血細胞凝集素(H)和神經氨酸酶(N)來命名,其中H有16個亞型,N有9個亞型。本試劑盒適用于檢測標本中的流感病毒H5、H7和H9亞型病毒RNA,適用于流感病毒H5、H7和H9亞型感染的輔助診斷及流行病學調查。
【檢驗原理】
本試劑盒用流感病毒H5、H7和H9亞型的特異性基因,分別設計2條特異性引物,分別結合1條特異性熒光探針,用一步法熒光RT-PCR技術對流感病毒H5、H7和H9亞型的RNA進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。
【試劑組成】
名 稱 | 規 格 |
H5/H7/H9酶液 | 50μL×1管 |
H5/H7/H9反應液 | 950ul×1管 |
H5/H7/H9陽性質控品 | 50μL ×1管 |
陰性質控品 | 50μL ×1管 |
說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融不超過5次,有效期12個月。
【適用儀器】
ABI 7300、7500、ABI stepone / stepone plus、安捷倫MX3000P/3005P、MJ Opticon2、Eppendorf 2/4 Color Systems、Bio-RadCFX96 等熒光定量PCR檢測儀。
【標本采集】
病死或撲殺禽,取喉氣管、腦、胸肌、心肌和肺等組織;待檢活禽,采集1ml血液樣本置于1.5ml滅菌離心管中,或用棉拭子取呼吸道分泌物或排泄物,置于1mL 50%甘油生理鹽水中。
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過6個月,標本運送應采用2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1. 樣品處理(樣本處理區)
1.1 樣本前處理
每份組織分別從3個不同的位置稱取樣品約1g,手術剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中;棉拭子直接取100μL于1.5mL滅菌離心管中;血液樣本待血凝后取血清100μL于1.5mL滅菌離心管中。
1.2 RNA提取
為了使實驗結果穩定、有效、可靠,建議使用商品化的RNA 提取試劑盒進行提取,嚴格按照對應試劑盒說明書進行操作。
2. 試劑配制(試劑準備區)
根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR反應管管數為N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽性對照;樣品每滿7份,多配制1份),每測試反應體系配制如下表:
試劑 | H5/H7/H9反應液 | 酶液 |
用量 | 19μL | 1μL |
3. 加樣(樣本處理區)
將步驟1提取的RNA、陽性質控品、陰性質控品各取5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。
4. PCR擴增(核酸擴增區)
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量PCR儀反應槽內;
4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為25μL;
熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM檢測禽流感病毒H5亞型、HEX/VIC檢測禽流感病毒H7亞型,CY5通道檢測禽流感病毒H9亞型,淬滅通道(Quencher Dye)選擇NONE,請勿選擇ROX參比熒光。
4.3 推薦循環參數設置:
步驟 | 循環數 | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 1cycle | 50℃ | 15min | 否 |
2 | 1 cycle | 95℃ | 3min | 否 |
3 | 45cycle | 95℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定
設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節Baseline的start值(一般可在3~15范圍內調節)、stop值(一般可在5~20范圍內調節),以及Threshold的Value值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。
5.2 結果判斷
陽性:檢測通道Ct值≤38.0,且曲線有明顯的指數增長曲線。
可疑:檢測通道38.0<Ct值<40.0,且出現典型擴增曲線的樣本建議重復試驗,重復試驗結果出現Ct值<40.0且有典型擴增曲線者為陽性,否則為陰性。
陰性:樣本檢測結果無Ct值且無明顯的擴增曲線。
6. 檢測方法的局限性
? 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;
? 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;
? 陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;
? 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;
? 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;
? 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;
? 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
7. 質控標準
陰性質控品:無明顯擴增曲線且無Ct值顯示;
陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且Ct值≤30;
以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。
8. 性能指標
(1)敏感性:內控樣本敏感性為100%,綜合評價敏感性98%以上。最低檢測限不低于1000copies/ml。
(2)特異性:100%。
(3)穩定性:批內及批間差異≤3%。
【注意事項】
? 所有操作嚴格按照說明書進行;
? 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,完全混勻并短暫離心;
? 反應液應避光保存;
? 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;
? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;
? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;
? 實驗完畢后用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;
? 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。
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